
中国生态农业学报 (中英文)
2022年11月 第 30 卷 第 11 期
Chine Journal of Eco-Agriculture, Nov. 2022, 30(11): 1709−1721
DOI: 10.12357/cjea.20220093
储薇, 郭信来, 张晨, 周柳婷, 吴则焰, 林文雄. 丛枝菌根真菌-植物-根际微生物互作研究进展与展望[J]. 中国生态农业学
报 (中英文), 2022, 30(11): 1709−1721
CHU W, GUO X L, ZHANG C, ZHOU L T, WU Z Y, LIN W X. Rearch progress and future directions of arbuscular mycorrhizal
fungi-plant-rhizosphere microbial interaction[J]. Chine Journal of Eco-Agriculture, 2022, 30(11): 1709−1721
丛枝菌根真菌-植物-根际微生物互作研究进展与展望
储 薇, 郭信来, 张 晨, 周柳婷, 吴则焰, 林文雄
(福建农林大学生命科学学院 福州 350002)
**
*
摘 要: 根际微生态作为土壤生态环境的热区, 以多种方式影响着植物的生长和代谢, 许多科学家将根系视为第二
次绿色革命的关键。丛枝菌根(arbuscular mycorrhizal, AM)是植物最普遍的菌根共生类别之一, 与陆地植物的进化
史密不可分。丛枝菌根真菌(arbuscular mycorrhizal fungi, AMF)与宿主植物根系形成的菌根共生体可改变植株根
系形态、改善营养状况, 从而促进宿主植物的生长发育, 提高抗逆性及抗病性, 参与植物的许多生理代谢过程, 并通
过对土壤结构及微生物群落结构的调节间接影响植物的生长。本文简述了AMF与植物、根际微生物和菌根辅助
菌(mycorrhizae helper bacteria, MHB)的互作研究结果, 探讨了菌根共生对植株建立、竞争、维持生物多样性及其
在地球环境生态中的重要作用。尽管AMF与植株共生已经表现出良好的生产效益, 但是大多数科学文献报道的研
究都是在受控条件(生长室或温室、无菌基质)下进行的, 由于AMF在自然环境中的响应可能会发生显著变化, 因
此我们还需要在田间条件下评估AMF的能力。其次, 进一步探索植物与真菌分子对话中的共生基因网络和关键转
录因子、破译MHB的关键代谢信号通路也十分重要。
关键词: 丛枝菌根真菌; 菌根网络; 生态功能; 促生作用; 抗性
中图分类号: S181开放科学码(资源服务)标识码(OSID):
Rearch progress and future directions of arbuscular mycorrhizal fungi-plant-
*
rhizosphere microbial interaction
CHU Wei, GUO Xinlai, ZHANG Chen, ZHOU Liuting, WU Zeyan, LIN Wenxiong
(College of Life Sciences, Fujian Agriculture and Forestry University, Fuzhou 350002, China)
**
Abstract: Microecology of rhizosphere, a key area of soil ecology, affects plant growth and metabolism in many ways. Many scient-
ists regard the root system as key to the cond green revolution. Arbuscular mycorrhizal (AM) is one of the most common mycor-
rhizal symbiotic categories of plants and is cloly related to the evolutionary history of terrestrial plants. Mycorrhizal symbionts
formed by arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) and host plant roots can change plant root morphology and improve nutritional status
to promote the growth and development of host plants, improve stress resistance and dia resistance, participate in many physiolo-
gical metabolic process of plants, and indirectly affect plant growth through the regulation of soil structure and microbial com-
munity structure. This paper briefly describes the interaction between AMF and plants, rhizosphere microorganisms, and mycorrhizal
helper bacteria (MHB); and discuss the important role of mycorrhizal symbiosis in plant establishment, competition, maintenance of
biodiversity, and its role in the Earth’s ecology. Although the symbiosis between AMF and plants has shown good production bene-
* 国家自然科学基金项目(31500443)、福建省自然科学基金项目(2022J01139)、2022年福建农林大学科技创新专项(KFb22046XA)和福建农
林大学生态学一流学科建设项目资助
** 通信作者: 吴则焰, 主要研究方向为森林生态学和分子生态学。E-mail: *******************
储薇, 主要研究方向为森林生态学和分子生态学。E-mail: ****************
收稿日期: 2022-02-11 接受日期: 2022-05-23
* This study was supported by the National Natural Science Foundation of China (31500443), the Natural Science Foundation of Fujian Province
(2022J01139), 2022 Fujian Agriculture and Forestry University Science and Technology Innovation Project (KFb22046XA), Fujian Agriculture and
Forestry University Ecological First-Class Discipline Construction Project.
** Corresponding author, E-mail: *******************
Received Feb. 11, 2022; accepted May 23, 2022
1710
中国生态农业学报(中英文) 2022第 30 卷
fits, most of the studies reported in the scientific literatures have been carried out under controlled conditions (growth chamber or
greenhou, sterile substrate). Becau the respon of AMF in the natural environment may differ significantly, it is also needed to
evaluate the ability of AMF under field conditions. It is also very important to further explore the symbiotic gene network and key
transcription factors in the molecular dialogue between plants and fungi, and decipher the key metabolic signaling pathway of MHB.
Keywords: Arbuscular mycorrhiza fungi (AMF); Mycorrhizas network; Ecological function; Growth promoting effect; Resistance
菌根是土壤中部分真菌的菌丝与高等植物根系
形成的一种共生体。共生真菌从植物体内获取生长
发育所必要的碳源与能源物质, 同时共生真菌扩大
根系的吸收范围, 增强植物对水和养分的吸收。菌
根真菌在陆地生态系统中广泛存在, 大部分现存的
维管植物和非维管植物均可与之形成菌根, 占全球
植物种类近80%, 其中又以被子植物居多。依据参
与共生的真菌与植物的种类以及所形成共生体系的
特点, 这些菌根主要被分为4大类: 外生菌根(ecto-
mycorrhizas, ECM)、丛枝菌根(arbuscular mycorrhizas,
AM)、兰科菌根(orchid mycorrhizas, ORM)和杜鹃花
类菌根(ericoid mycorrhizas, ERM)。
其中AM分布最为广泛(72%), 自早期陆地植物
定殖起就发挥着重要作用, 与植物进化史密不可分。
AM的主要特点是在植物根内产生“泡囊” (vesi-
cules)和“丛枝” (arbuscles)两大典型结构, 因此称泡
囊-丛枝菌根(vesicular-arbuscular mycorrhiza, VAM)。
但部分类型的真菌不能在根内产生泡囊, 却均可形
成丛枝, 故此类菌根又称丛枝菌根, 此类真菌便称为
丛枝菌根真菌 (arbuscular mycorrhizal fungi, AMF)。
AMF属于球形菌门(Glomeromycota), 被分为球囊菌
纲(Glomeromycetes)、原囊霉纲(Archaeosporomy-
cetes)、类球囊霉纲(Paraglomeromycetes) 3类, 截至
目前, 共发现11科25属250种。AMF与植物之间
的相互作用提高了植物对土壤资源的利用率, 能更
好地应对各种环境胁迫, 特别是气候变化、干旱胁
迫、盐碱和重金属污染
, 也增强了植物对生物干
扰的耐受性。随着我国生态农业的发展, 菌根的研
究及应用受到了广泛关注。本文综述了AMF与植
物、其他土壤微生物和菌根网络的互作研究成果,
探讨了菌根共生对植株建立、竞争、维持生物多样
性及其在地球环境生态中的重要作用, 并对AM的
研究提出了展望, 旨在为进一步理解AMF在植物互
作中的生态学功能提供参考。
被称为“菌基”。菌基和表皮细胞壁在软化和交织过
程中附着
, 穿透菌丝, 继续发育后穿过外层根细胞
层, 形成松散的细胞内卷曲或分枝菌丝两种不同的
定殖模式, 最后到达内皮层细胞, 形成树状的丛枝菌
丝。AMF的菌丝从来不直接接触宿主植物细胞的
细胞质, 而是被限制在质外空间的不同共生界面内。
这个界面被丛枝周膜(peri-arbuscular membrane,
PAM)包裹, 并将丛枝从细胞质中分离出来, 形成营
养物质交换的主要场所, 因此被认为是所有菌根共
生体的功能核心。
在AMF的定殖过程中, AMF激活了植物细胞分
裂的相关机制。植物根系则通过合成释放类胡萝
[11]
[10]
[9]
[8]
[1]
[2]
卜素衍生物、类黄酮等, 诱导AMF的能量代谢, 刺
激孢子的萌发和菌丝分枝。宿主植物将合成的
[12-13]
脂肪酸转移到真菌中以维持AMF定殖, 该转移依赖
于RAM2 (Required for Arbuscular Mycorrhization 2)
和ATP结合盒转运蛋白介导的植物脂质运输途径。
此外脂肪酸也可诱导AMF在非共生阶段产生次生孢
子。从根分泌物中提取的一种纯化倍半萜内酯−
独脚金内酯(strigolactone, sl)和合成类似物GR24已
被证明能诱导AMF菌丝分支并激活其线粒体能量
代谢。一些非宿主植株根系的分泌物会抑制AMF
产孢和对宿主植物的侵染。土壤P的有效性和宿主
植物C含量以及与菌根的根、孢子、孢子果和根外
菌丝共生的细菌也均被证明为激活或抑制AMF共
生的信号。蛋白磷酸酶2A (Protein Phosphata
[17-19]
[16]
[15]
[14]
[3]
[4]
[5][6]
[20]
[7]
2A, PP2A)调控亚基已被证明参与植物与AMF之间
的信号传递过程。针对AMF共生中N、C、P等
[18]
元素吸收、同化和转运的具体过程, 研究者们已构
建了多种模型。
1.2 AMF与宿主植物的互作
一般认为, AMF主要以糖的形式从植物中吸收
营养物质。而AMF通过多种途径提高共生植物对
水分、营养元素的吸收和重金属元素的固持, 促进
植株生长
, 特别是对胁迫环境中P、K等的吸收以
及植物干重增加具有重要意义。菌根植物还比
[24][21][25]
[22-23]
[21]
1 丛枝菌根真菌与植物互作
1.1 共生机制
AMF孢子在土壤中萌发, 产生的菌丝通过扁平
的分枝结构接触宿主植物侧根表皮细胞, 这种结构随土壤有机质的增加, 养分吸收能力也会增强, 但随
非菌根植物含有更多的C、N、Fe和Zn
, 并且
第 11 期储 薇等: 丛枝菌根真菌-植物-根际微生物互作研究进展与展望
1711
着P的增加会降低AMF侵染率和加剧AMF孢子的抗旱性, 后者也可能作为渗透保护剂。AMF通常
化。近些年发现兰花科 (Orchidaceae) 和杜鹃花科还会诱导植物根系结构发生改变, 特别是根系长度、
(Ericaceae)中的一些绿色光合作用植物可以从与其, 在缺水环境下, 菌根植
根共生的AMF中吸收C, 这种双重营养能力被称为物较好的根系结构使根外菌丝能够扩展到植物根际
混合营养。最新研究发现植物可以依据自身P营耗竭区之外, 从而更有效地吸收水分和低流动养分
养状态, 通过P响应网络对直接P吸收途径和菌根
共生P吸收途径进行统一调控。这些真菌通过土西瓜[Citrullus lanatus (Thunb.) Matsum. et Nakai]水分
壤中的根外菌丝网络吸收P, 并将其传递给宿主植物。利用率。这表明AMF不仅能提高水分吸收, 还能
除了这一机制外, 也有人提出AMF通过调节土壤酶使寄主植物更有效地利用水分。这也可以归因于增
活性来提高土壤P的有效性、酸性磷强了蒸腾和气孔导度。
, 如植酸酶, 以及增加养分的可用性
酸酶、碱性磷酸酶和脲酶等, 但作用强度
[31-32][33][34]
[29][30][47][48]
[28]
[27]
[26]
密度、直径和侧根数量
[43-44]
(P、Zn、Cu等)(图1)。据报道, 接种AMF可提高
AMF对重金属离子有一定的固持作用, 从而减轻其
对宿主植物的毒害。以Cd为例, 研究者发现AMF主要取决于菌丝在土壤中的生长状况。一方面, 根
能够提高暴露于高Cd环境下的菌根植株对Mg、P系会分泌酸性磷酸酶, 在低P条件下, 宿主植物中参
的吸收与酸性磷酸酶分泌的基因被AMF共生菌上调, 从而
, 从而提高叶绿素浓度, 提高光合产物的产
量, 继而增加生物量增加了菌根中酸性磷酸酶的释放。另一方面, AMF
[51][35]
[50]
[49]
[46]
[45]
还能直接从菌丝中释放酸性磷酸酶到土壤中。上部和根系生物量的有害影响。AMF接种后植株
[36-37]
, 在很大程度上减轻Cd对地
中Cd浓度降低的另一个原因可能是由于皮层虽然AMF会促进P的总吸收, 但AMF菌丝的P运
细胞内真菌结构中Cd的积累和生物量增加所产生输通常比通过从土壤扩散到根部的直接获取方式更
的稀释效应。Xiao等快。证明, AMF通过增强酸性磷
[52][23][38]
, 会干扰根的直接吸收
除养分吸收外, AMF的形成对于促进植物提高酸酶以及抗氧化酶(CAT、SOD、NM04A等)的活性,
植物抗病性、抗逆能力以及提高作物品质具有重要提高其清除活性氧(ROS)的能力, 并通过稀释作用
意义。AMF诱导宿主植物细胞壁加厚、病程相关蛋缓解Cd毒性, 从而减轻了秸秆还田对高Cd污染土
白的积累和次生代谢的增强等防御反应壤中白羊草[Bothriochloa ischaemum (L.) Keng]生长。许多
浓度屏障, 阻止Cd向地上部转移。有些重金属离子水、产生抗氧化酶(SOD、POD、CAT)和可溶
[41][6]
[42][53]
[39-40]
的负面影响。在Cd胁迫条件下, AMF网络作为一个研究表明, 接种AMF可以通过调节脱落酸(ABA)的
平的提高甚至可以增加AMF侵染率。性糖、降低无机和有机溶质的净积累来提高植株
养分耗竭带
Nutrient depletion
zone
根系
Root
土层
Soil
有效吸收面积
Effective absorption
area of nutrients
菌根网络
Mycorrhizal networks
非菌根共生
Non-mycorrhizal symbiosis
菌根共生
Mycorrhizal symbiosis
图 1 丛枝菌根定殖的积极作用
Fig. 1 Positive effect of colonization of arbuscular mycorrhizal fungi (AMF)
AMF的菌丝(紫色)延伸到枯竭带(白色)之外, 能够增加养分的有效吸收面积, 促进AM根吸收多种营养物质(其中浅蓝色箭头表示养分流动
方向)。但菌丝周围最终也会形成养分耗竭带。The hyphae of AMF (purple) extend beyond the depletion zone (white), which can increa the effective ab-
sorption area of nutrients and promote the absorption of multiple nutrients by AM roots. Light blue arrows indicate the direction of nutrient flow. But nutrient
depletion zones also eventually form around the AM hyphae.
1712
中国生态农业学报(中英文) 2022第 30 卷
[69]
近些年人们发现菌根生菜(Lactuca sativa L. var.植物的影响度可能比施用P或耕作更大。
ramosa Hort.)叶片中花青素、类胡萝卜素和酚类物
质的含量高于对照
[54]
AMF在保护宿主植物免受化感物质的有害影
响的同时, 会将影响延伸到根际以外。有研究发
[70]
, 而在草莓(Fragaria×ananassa
[55]
Duch.)果实中, AMF定殖增加了矢车菊素-3-O-葡萄
糖苷(cyanidin-3-O-glucoside chloride)的含量。AMF
共生促进果实花青素含量的增加和脱落酸ABA代
谢的调节, 不仅是在不断变化的环境中提高浆果品
质的有效手段
有一定作用。盐度条件下施用AMF对观赏植物
[57]
[4,56]
现AMF可将除草剂和化感物质运输到与之竞争的
植物体内, 阻碍宿主植物附近15~20 cm其他植物的
生长。
[71]
, 对提高多种作物的质量和产量也
[58]
2 AMF与其他根际生物的互作
菌根真菌还介导植物与其他根际生物的互作。
菌根圈内的主要成员(根系、细菌、真菌、线虫等)
之间往往通过协同和/或拮抗作用影响土壤群落的组
成、相互作用和物种多样性, 达到动态平衡。
证明在盐胁也有积极作用。例如, Gómez-Bellot等
−+
迫下, Tenuihypharum sp. nova能够增强植株对P、K、
Ca和Mg的吸收, 同时减少有毒离子(Na)向茎
和Cl
部的转运, 对康乃馨(Dianthus caryophyllus L. Kazan)
和柃木(Eurya japonica Thunb.)的生长和观赏品质有
改善作用。接种AMF还可促进观赏植物的生长和
开花, 特别是在低肥条件下。
与AMF共生的植物可以在营养不良的条件下
获得生长优势。但不同属的AMF在功能上存在
[60]
[61]
[59]
2.1 AMF与菌根辅助菌(mycorrhizae helper bac-
teria , MHB)的互作
长期以来, 菌根共生关系被认为是两类物种之
间的相互作用, 然而, 研究发现AMF孢子壁内、孢
子壁上或细胞质中承载着多种细菌。这些细菌类群
通常嵌在孢子壁的外层或由包围在各种球囊霉
(Glomerales)孢子周围的菌丝形成的微孔中(图2)。
属于不同属的细菌构成一个密集的、活跃的细菌群
落, 表现出不同的功能能力, 特别是促进AMF孢子
萌发和非共生菌丝生长。几丁质分解细菌占从摩西
管柄囊霉(F. mosae)孢子壁分离的所有几丁质分
解微生物的72%
, 表明它们有能力消化AMF孢子
的外壁, 在AMF孢子萌发过程中发挥着重要的功能
作用, 因此被称为MHB。一些AMF的孢子在MHB
的存在下, 孢子萌发率和萌发程度更高。从菌根际
分离的类芽孢杆菌(Paenibacillus spp.)和芽孢杆菌
(Bacillus spp.)也同样促进了AMF的生长
。并且在
体外培养条件下, 强壮类芽孢杆菌(Paenibacillus val-
idus)也能诱导根内球囊霉-Sy167产生可育孢子
[73]
[72]
[71]
一定差异
, 一些AMF物种甚至可能会导致生长抑
制。提高根际养分吸收的有效性, 促进养分从土壤
向植物转移的基础是AMF结构和功能的多样性, 包
括其侵染繁殖体、囊泡状脂质储存结构、类似树状
结构的丛枝和与根相连的丝状菌丝等。赋予宿主的
不同效益通常与AMF物种从其宿主身上提取的C
量、获得P的能力、营养储存策略等有关。在
[62][63]
共生过程中, AMF之间的竞争往往导致某些物种主
导寄主定殖, 其结果取决于环境条件。不同植物种
类对AMF具有一定的特异招募性, 植株年龄与生长
阶段、根系状况等都会影响AMF孢子分布。AMF
[64]
[65]
与植物之间的相互选择和合理匹配, 是影响植物养
分获取和菌丝发育的关键。
。
1.3 AMF与非宿主植物的互作
宿主植物可通过影响与其共生的菌根真菌而影
响其他植物, 非宿主植物也可通过产生化感物质和
挥发性有机化合物, 抑制与其他植物共生的菌根真
菌。一些与宿主植物共生的AMF可以进入非宿
[66]
因此MHB被认为是AMF-植物共生中的第3部分,
然而, 关于细菌活动对孢子萌发和菌丝生长的作用
机制的信息很少。
MHB还通过触发各种植物生长因子, 显示出促
进植物生长的特性。MHB已被报道参与生产抗生
素对抗真菌植物病原体、合成生物活性化合物
以及供应营养等, 包括吲哚乙酸(IAA)的产生、
[76]
[74][75]
主植物的根系, 而不形成典型的菌根结构, 而这种非
典型菌根定殖通常会抑制非宿主植物的生长, 但会
增强诱导系统的抗性。AMF有时会扭曲非共生植
物的根组织, 阻碍其根的发育和功能。在轮作中,
[68]
[67]
[77]
固N、磷酸盐和植酸盐的溶解等功能活动。这些
功能对于AMF及MHB作为生物肥料的可能用途是
非常重要的, 使AMF更有效地促进植物对土壤中养
分的吸收, 因此也被称为AMF生物增强剂。
值得注意的是, 由于AMF是一种专性植物共生
体, 具有土壤基菌丝和孢子, 严格与孢子共生的细菌群对AMF群落产生显著的负面影响, 其对高度菌根化
[78]
非寄主植物如十字花科(Brassicaceae)、藜科(Cheno-
podiaceae)等或定殖能力弱的作物如菠菜(Spinacia
oleracea L.)或辣椒(Capsicum annuum L.)等种植会
第 11 期储 薇等: 丛枝菌根真菌-植物-根际微生物互作研究进展与展望
根外菌丝
Extraradical hyphae
表皮
Epidermis
生物膜
Biofilm
N
H
+
4
皮层
Cortex
内表层
Endodermis
1713
N
2
丛枝
Arbuscules
泡囊
Vesicules
P
细菌
MHB
厚垣孢子
Chlamydospore
图 2 植物根部-丛枝菌根菌-菌根辅助菌之间的相互关系
Fig. 2 Interrelationship between plant roots-arbuscular mycorrhizal fungi-mycorrhizae helper bacteria
菌根辅助菌(MHB)可以位于孢子和菌丝内部和/或周围, 在菌丝消化后释放到根和细胞中。IP: 不溶性磷; P: 可溶性磷; N
2
: 大气氮; : 铵。
NH
+
4
Mycorrhizae helper bacteria (MHB) can be located inside and/or around spores and hyphae and relead into roots and cells after hyphae digestion. IP: insoluble
phosphorus; P: soluble phosphorus; N: atmospheric nitrogen; : ammonium.
2
NH
+
4
I
P
落组成可能会因特定的孢子壁组成和根系分泌物
,
或培养基质和寄主植物特性等环境变量而变化。
[79]
可通过个体发育在AMF共生树种中积累
, 而AMF
可以增强宿主植物对许多土传真菌病原体的防御能
力。例如减轻链格孢属(Alternaria)、丝核菌属
[92][93]
[91]
[80]
2.2 AMF与植物促生菌的互作
一些根际微生物通过产生植物激素或酶等促进
植物生长的物质、增溶必需营养素或抑制植物
病原体来促进植物生长, 被称为植物促生菌(plant
[83]
[81][82]
[94]
(Rhizoctonia)
[95]
等多种病原菌的侵袭, 还可调节易感
枯萎病香蕉(Musa nana Lour.)幼苗中防御相关基因
的表达。AMF诱导植物对病原物防御能力的增加
或感病性下降的前提条件是在病原菌污染前就形成
菌根并发育良好, 而且其潜在的拮抗作用的有效性
还有赖于土壤中病原物的侵染势和致病性。这可
能与植物免疫系统的研究所揭示的病原菌感染和
AM定植之间的相似性有关, 导致了AMF共生和抗
病之间的权衡。通路关系。有发现指出AMF和PGPB的双重
此外, AMF定殖可以增强宿主对叶面病原菌的
抵抗力, 例如稻瘟病菌(Magnaporthe)。植物对病
毒感染的抗性可由多种生物和非生物制剂诱导。在
许多针对植物病害的病毒的研究中, AMF作为生物
诱导剂的应用已经观察到大量与诱导系统抗性(in-
duced systemic resistance, ISR1)有关的化学和生理变
化, 这些化学和生理变化包括细胞死亡和氧化破裂,
胼胝质的沉积和木质素, 植物抗毒素的合成和新蛋
白质等。
目前能够解释AMF抑制土传病原物提高植物
抗病性的作用机制主要包括: 改善植物营养、改变
根系形态结构、与病原物竞争光合产物、病原菌其次是植物病原性细菌和病毒。其中多种致病真菌
[68]
[98]
[97]
[96]
[84]
growth promoting bacteria, PGPB)。菌根的形成有利
于PGPB的生长和繁殖
, 提升根际PGPB数量及种
类来缓解胁迫。同样, 许多促生菌对AMF菌丝生
长、根部定殖和产孢量也有着显著的积极影响。
[87][88-89]
[85-86]
[75]
PGPB、AMF与其寄主植物之间存在着复杂的信号
接种降低了Al-P、Ca-P和Fe-P在土壤基质中的固
定, 增强了养分吸收, 提高了杨梅的抗旱性和精油含
量。AMF与根瘤菌具有显著的协同作用, 可显著提
高植株的结瘤、固氮、营养、种子产量和生物量
,
植物的抗逆性和抗病性也远优于单接种。因此, 植
物-PGPB-AMF联合共生研究在实践应用方面具有
广阔前景。然而双接种的正效应也受到不同组合
AMF、PGPB和植物的匹配关系与环境条件的影响,
具有一定局限性。
[29]
[90]
2.3 AMF与致病菌的互作
植物病害中, 真菌导致农作物减产的影响最大,
1714
中国生态农业学报(中英文) 2022第 30 卷
[14]
定殖所必需的植物脂肪酸和侵染位点、调节菌根融合发生在一些菌丝生长非常接近的地方, 以至于
围内微生物区系、组成激活植物防御机制等方
[99][100]
没有形成桥梁, 在直接接触的菌丝壁已经溶解的区
域也观察到原生质流, 从而证实菌丝间已经发生了融
合。MNs存在的最强有力的证据来源于维管植物
和非维管苔类, 因其具有很强的共生特异性
N
[110]
[109]
[108]
面。土壤负反馈和差异化菌根效应有利于AMF植
物的共存, 导致植物、土壤微生物和动物的高度多
样性。目前AMF已被广泛应用于各种植物病原菌
的生物防治方面。
, 且已
被发现其利用菌根网络从邻近的自养植物中获取C、
。菌根真菌网络的功能强度取决于宿主植物C
[111]
2.4 AMF与土壤动物的互作
植物与菌根和固氮细菌的共生关系会促进植物
生长, 提高作物产量, 帮助植物抵抗一些有害昆虫。
cines Ichinohe, SCN)
incognita Kofoid)
[103]
[102]
[101]
分配模式、菌根特性、不同种类植物与真菌的组合,
以及土壤中N、P浓度、温度等土壤环境因素。
例如, AMF还可降低大豆胞囊线虫(Heterodera gly-
、南方根结线虫(Meloidogyne
等病原线虫对植物所造成的危害
3.1 菌根网络对单株植物的影响
通过对植物间营养转移及信号传递的影响,
MNs已被证明在广泛的生态系统中促进单株植物的
萌发、存活、生长或防御调节。有研究发现
[112][113]
程度, 甚至抑制线虫繁殖。但在另一项研究中, 接种
AMF 12周后, 绿豆[Vigna radiata (L.) Wilczek]根中
根结线虫的种群密度增加, 且与植株营养状况呈正
相关。蚯蚓、蚂蚁、马陆、白蚁等土壤动物对
[104]
AMF介导的资源的地下竞争是营养不良系统中幼苗
定植成功的重要因素。一些研究表明MNs连接起来
的植物中, 任何一方的根系开始分解时, AM在其间
的N和P的流动中起重要作用, 即根内AMF的定殖
能极大地提高受体植物从垂死的供体植物根部获得
N和P的能力, 增强幼苗的地下竞争能力, 从而促
进幼苗的建立。种内成熟个体-幼苗相互作用既有促
进性又有竞争性, 分离土壤、AMF和根系途径的研
究发现, MNs的积极作用部分被根系竞争所抵消。
[1]
[114]
[17]
[105]
AMF的传播存在一定影响, 它们所携带的真菌繁殖
体活力也不尽相同。但有一些小型节肢动物, 如
螨和一些弹尾目昆虫常以AMF的孢子和菌丝为食,
因此对AMF的生存不利。
3 菌根网络(mycorrhizal networks, MNs)
菌丝的再侵染是指根外菌丝体接触到其他植物
根系时, 由于菌根共生中植物和真菌之间普遍缺乏
特异性, AMF自由基菌丝可通过菌丝之间自我识别
高度调控菌丝间的融合程度以及融合后的作用强度,
再次侵染定殖, 在相同或不同种的植物之间形成联
系。这种真菌菌丝在较近的距离或较短的时间内聚
集并将两种或两种以上植物的根连接在一起所形成
的结构, 就是菌根网络。除单株AMF菌丝体的再侵
染外, 形成MNs的另一条重要途径是菌丝间的融合。
但并非所有的菌丝之间相互接触都会发生融合,
AMF具有很强的自我识别机制, 非自交不亲和,
异。Croll等研究来自根内根生囊霉(Rhizo-
[99][107]
[106]
Tedersoo 等
认为菌根真菌通过稳定和平衡土壤养
分分配、反馈给土壤拮抗剂、不同菌根效益和养分
交易等机制来调节幼苗的建立和物种共存。
3.2 菌根网络对植物间联系的影响
菌根菌丝体为物质在土壤中的流动提供了广泛
的途径, 极大地促进了植物间的相互作用, 特别是养
分循环和信息传递
迫势的增加而增加。MNs在植物间的影响并不对
称
[117]
[115]
, 且这种促进作用随着养分胁
[116]
[118]
, 完全或部分真菌异养植物可通过MNs从优势
。一般情况下, 通植物个体获得部分或全部能量
速的植物可能更有利
长速率无关。但有研究表明, 连接到周围植物的
[119]
[111]
过MNs的C转移对根系较小、活性较低、生长快
, 而转移量与供体植株苗生
[120]
但不同基因型的AMF在吻合度上可能存在显著差
phagus irregularis)的多株菌株发现, 遗传上不同的
AMF之间存在细胞质连接, 通过这些连接, AMF之
间发生了遗传交换, 且混交明显。
MNs存在于所有主要的陆地生态系统中。通常
彼此融合的两者的菌丝通过产生桥状结构融合在一
起。短于50 μm被称为“短桥”, 而长于50 μm被称为
“ 长桥”。原生质通过菌丝桥在两个菌丝之间流动, 证
实了菌丝体的连续性。研究还发现一种独特的融合
行为, 不涉及菌丝尖端或突起的菌丝。细胞壁和膜间传递抗病信号以及化感物质。Alaux等发现
MNs对建立杂类草和禾本科(Poaceae)植物幼苗的
生物量有负面影响。当联系起来的宿主植物中有
[121]
一方被寄生时, MNs优先向未寄生的宿主植物分配
更多矿质营养, 这对寄生者的生长产生负反馈
(图3)。
AMF胞外菌丝体发生融合和交换细胞核的能力
表明, 除了营养流之外, 植物激素和其他信号流也可
能在网络中活跃。MNs可作为植物与植物之间的
[122]
[71][123]
地下通信管道, 在健康和病原菌感染的相邻植物之
第 11 期储 薇等: 丛枝菌根真菌-植物-根际微生物互作研究进展与展望
昆虫
Inct
1715
宿主植物异种
Host plantsHeterospecific
真菌异养植物混合营养植物
MycoheterotrophMixed vegetative plants
(MH)
同种近缘
同种非亲缘
Conspecific kinConspecific non-kin
非菌根植物
Non-mycorrhizal
plants (NM)
不同种的菌根网络
Mycorrhizal networks of different species
图 3 菌根网络对植物间物质循环及信号传递的影响
Fig. 3 Effects of mycorrhizal networks on material circulation and signaling between plants
图中彩色线条表示不同种的菌根网络(红、蓝、绿)。箭头中蓝色箭头表示物质循环的方向, 红色箭头表示信号传递的方向, 黑色箭头表示昆
虫对植株的损伤。The colored lines in the figure indicate mycorrhizal networks of different species (red, blue, green). The blue arrows indicate the direction
of the material cycle; the red arrows indicate the direction in which the signal is transmitted; the black arrow indicates damage to the plant by incts.
菌丝直接参与了从患病马铃薯(Solanum tuberosum
L.)幼苗到未感染马铃薯幼苗的防御信号的传递, 激
活未感染植物中的防御反应。
散和竞争, 从而形成植物种群和群落, 并调节局部尺
度上的植物共存和多样性。多种类型菌根共存时,
所有菌根类型的真菌都在争夺矿物质营养, 但它们
对有机营养吸收能力的不同, 使资源得到了一定程
度的垂直生态位分配。树木β多样性的纬度格局也
主要由AM树种决定。土壤养分的细尺度干扰和
空间异质性可进一步促进与不同真菌类群共生的植
物共存。植物菌根类型之间的生态位分化潜在增
[127]
[13]
3.3 菌根网络对生态系统结构和功能的影响
Engelmoer等
[124]
利用人工根系(玻璃根器官培
养), 研究了两种近缘AMF物种(Rhizophagus irregu-
larisGlomus aggregatum)在不同P胁迫下的根内和
、
根外竞争关系。结果发现在根内定殖过程中, 宿主
内部AMF物种间的竞争尤其激烈, 这两个物种对彼
此的丰度都产生了负面影响。这可能是因为在根际
定殖时, 根内生长空间更加有限。P的有效性并
[125]
加了菌根类型之间的竞争, 同时促进了属于不同菌
根类型的植物之间的共存。
植物-真菌菌根系统本身和相互连接的菌丝网络
协同决定了宿主植物的功能特性, 从而决定了宿主植
物的个体生态。近年来人们越来越认识到MNs在养
分和水循环中的重要性, 及其反馈全球变化的潜力。
没有改变这些相互作用的结果。在植物群落水平上,
MNs被认为可通过影响植物间的相互作用、植物群
落多样性以及有可能通过放大或平衡植物竞争来调
节植物共存。在干扰后, 保护幸存的成年植株对
[126]
[128]
次生林的建立很重要。从生态系统的角度来看, 在
物种丰富的生态系统中, MNs可通过促进干扰幼苗
的建立, 促进森林的自我更新, 并对生态系统的变化
起到负反馈作用。在极端情况下, MNs促进作用可
能仅限于单一植物物种, 通过MNs进行养分转移可
能仅增强该物种的竞争能力。在这种情况下, 它将
破坏植物群落结构的稳定, 并对生态系统的变化起
到正反馈的作用, 从而维持生态系统的状态。
MNs及真菌多样性直接或间接地影响植物的扩
[95]
4 讨论与展望
本文综述了AMF在菌根生物学和生态学方面
的最新进展。AMF是全球养分循环的主要驱动力,
在陆地生态系统中起着关键作用。AMF为植物提供
矿物质营养以及逆境条件下给予保护, 进而对种子
的传播、幼苗的建立、种间和种内的竞争、土壤生
态位的分化以及植物多样性产生特定的影响。研究
发现: 1)开展菌根真菌和PGPB双接种研究对改善
作物生长具有重要意义。2)获得残留成熟树木的
1716
中国生态农业学报(中英文) 2022第 30 卷
MNs和菌根对植物群落受到干扰后幼苗的建立十分
关键, 对于因立地退化、外来AM杂草入侵或气候
变化胁迫区域再造林至关重要。由于根系具有许多
以前被忽视的潜在基因变异, 许多科学家开始把根
系视为生产高产作物的核心, 并将注意力转向根系
以期提高作物产量, 并认为根系是第二次绿色革命
的关键。然而, 这场地下革命仍处于初级阶段。
[129]
法很大程度上依赖于经验和资料的掌握。尽管分子
鉴定可以为其进行补充和完善, 获得各种菌根真菌
的个体基因组, 与植物根系相关的真菌群落的元基
因组也正在被揭示, 但完整的植物微生物群在很大
程度上是缺失的。要了解菌根真菌与菌根网络的
[132]
其他成员之间的相互作用, 以及菌根如何与其他土
壤生物群相互作用来驱动生态系统的功能, 仍然是
一个重大挑战。测序技术和生物信息学的进步将有
可能解决这个问题。最后, 在全球环境变化的背景
下, 人类活动对菌根生长和功能的影响还没有得到
充分的理解, 仍需进一步探索。
作物基因型、现实农艺实践、作物-AMF关联和作
物产量之间的关系较为复杂, 因此, 当科学提倡将
AMF用作可持续农业集约化的主要手段时, 就需要
强有力的系统农艺方法。
菌圈相互作用的新图景具有以前无法想象的复
杂性。其中不同的组合: 宿主植物-AMF-MHB可能
存在不同的相互作用, 并提供新的多功能效益, 改善
植物和真菌的性能。例如, MHB可以沿着菌丝移动
到相关的土壤(菌丝圈), 在那里它们可以提高养分的
有效性(例如溶P、固N和几丁质分解细菌)
[130]
参考文献 References
[1]TEDERSOO L, BAHRAM M, ZOBEL M. How mycorrhizal
associations drive plant population and community biology[J].
Science, 2020, 367(6480): eaba1223
[2]MIYAUCHI S, KISS E, KUO A, et al. Large-scale genome
, 抑
[3]TEDERSOO L, SÁNCHEZ-RAMÍREZ S, KÕLJALG U, et al.
quencing of mycorrhizal fungi provides insights into the
early evolution of symbiotic traits[J]. Nature Communications,
2020, 11: 5125
制植物病原体(如铁载体和产生抗生素的细菌), 促进
植物生长(如产生IAA的细菌)等。为了解MHB的
不同组成是否决定了AMF分离株在传染性和效率
方面的不同性能, 破译MHB的关键代谢信号通路,
并阐明其作为菌根辅助菌的功能意义显得尤为重要。
接下来, 应该从表现最好的群落中分离单个菌株, 以
研究其功能意义, 并选择最佳的AMF-MHB组合来
用作生物肥料和生物增强剂。
其次, 植物和AMF之间的分子串扰才刚刚开始
被揭示, 与其他植物-微生物相互作用的知识[如根
瘤菌-豆科(Fabaceae)植物、疫霉-茄科(Solanaceae)
作物]相比明显滞后, 目前还不清楚哪些基因调控菌
根共生的建立和维持。因此, 探索植物与真菌分子
对话中的共生基因网络和掌握转录因子是理解植物
与真菌共存和菌根共生的关键因素。
另一个重大问题是将分子数据和代谢途径与生
态生理和生态过程联系起来, 例如获取营养、抵御
压力和疾病的保护。尽管AMF与植株共生已经表
现出良好的生产效益, 然而, 由于大多数科学文献报
道的研究都是在受控条件(生长室或温室、无菌基
质)下进行的, AMF在自然环境中的响应可能会发生
显著变化, 因为大量的生物和非生物胁迫会与这些
真菌相互作用, 并可能影响它们的性能。这使得评
估田间条件下AMF提高作物生产力的能力显得尤
为重要。
此外, 以真菌结构特别是孢子的形态特征为依
据仍是目前AMF菌种鉴定的主要依据
[131]
High-level classification of the fungi and a tool for
evolutionary ecological analys[J]. Fungal Diversity, 2018,
90(1): 135−159
[4]TORRES N, ANTOLÍN M C, GOICOECHEA N. Arbuscular
mycorrhizal symbiosis as a promising resource for improving
berry quality in grapevines under changing environments[J].
Frontiers in Plant Science, 2018, 9: 897
[5]SYMANCZIK S, LEHMANN M F, WIEMKEN A, et al.
Effects of two contrasted arbuscular mycorrhizal fungal
isolates on nutrient uptake by Sorghum bicolor under
drought[J]. Mycorrhiza, 2018, 28(8): 779−785
[6]SHI W G, ZHANG Y H, CHEN S L, et al. Physiological and
molecular mechanisms of heavy metal accumulation in
nonmycorrhizal versus mycorrhizal plants[J]. Plant, Cell &
Environment, 2019, 42(4): 1087−1103
[7]HEIJDEN M G A, MARTIN F M, SELOSSE M A, et al.
Mycorrhizal ecology and evolution: the past, the prent, and
the future[J]. New Phytologist, 2015, 205(4): 1406−1423
[8]DEAMALEY J, MARTOS F, SELOSSE M A. Fungal
Associations[M]. Berlin: Springer Berlin Heidelberg, 2012:
39–49
[9]LUGINBUEHL L H, OLDROYD G E D. Understanding the
arbuscule at the heart of endomycorrhizal symbios in
plants[J]. Current Biology, 2017, 27(17): R952−R963
[10]ROTH R, HILLMER S, FUNAYA C, et al. Arbuscular cell
invasion coincides with extracellular vesicles and membrane
tubules[J]. Nature Plants, 2019, 5(2): 204−211
[11]RUSSO G, CAROTENUTO G, FIORILLI V, et al. Ectopic
activation of cortical cell division during the accommodation
of arbuscular mycorrhizal fungi[J]. New Phytologist, 2019,
221(2): 1036−1048
[12]KOBAE Y, KAMEOKA H, SUGIMURA Y, et al.
, 但这种方
Strigolactone biosynthesis genes of rice are required for the
第 11 期储 薇等: 丛枝菌根真菌-植物-根际微生物互作研究进展与展望
1717
punctual entry of arbuscular mycorrhizal fungi into thearbuscular mycorrhiza requires a thorough investigation[J].
roots[J]. Plant and Cell Physiology, 2018, 59(3): 544−553The New Phytologist, 2022, 234(4): 1112−1118
[13][27]ZHONG Y L, CHU C J, MYERS J A, et al. ArbuscularSELOSSE M, ROY M. Green plants that feed on fungi: facts
mycorrhizal trees influence the latitudinal beta-diversityand questions about mixotrophy[J]. Trends in Plant Science,
gradient of tree communities in forests worldwide[J]. Nature2009, 14(2): 64−70
Communications, 2021, 12(1): 3137[28]SHI J, ZHAO B, ZHENG S, et al. A phosphate starvation
[14]JIANG Y N, WANG W X, XIE Q J, et al. Plants transfer lipidsrespon-centered network regulates mycorrhizal symbiosis[J].
[29]fungi[J]. Science, 2017, 356(6343): 1172−1175SHETEIWY M S, ALI D F I, XIONG Y, et al. Physiological
Cell, 2021, 184(22): 5527−5540to sustain colonization by mutualistic mycorrhizal and parasitic
[15]KAMEOKA H, TSUTSUI I, SAITO K, et al. Stimulation ofand biochemical respons of soybean plants inoculated with
arbuscular mycorrhizal fungi and Bradyrhizobium underasymbiotic sporulation in arbuscular mycorrhizal fungi by fatty
drought stress[J]. BMC Plant Biology, 2021, 21(1): 195acids[J]. Nature Microbiology, 2019, 4(10): 1654−1660
[30][16]SALVIOLI A, GHIGNONE S, NOVERO M, et al. SymbiosisWANG X X, HOFFLAND E, FENG G, et al. Phosphate
with an endobacterium increas the fitness of a mycorrhizaluptake from phytate due to hyphae-mediated phyta activity
fungus, raising its bioenergetic potential[J]. The ISME Journal,by arbuscular mycorrhizal maize[J]. Frontiers in Plant Science,
2016, 10(1): 130−1442017, 8: 684
[17][31]TESTE F P, SIMARD S W. Mycorrhizal networks andTRISILAWATI O. Effect of arbuscular mycorrhizal fungi
distance from mature trees alter patterns of competition andbiofertilizer on the growth of cashew edling[J]. Journal
facilitation in dry Douglas-fir forests[J]. Oecologia, 2008,Penelitian Tanaman Industri, 2020, 17(4): 150
158(2): 193−203[32]THIOYE B, LEGRAS M, CASTEL L, et al. Understanding
[18]WANG S S, CHEN A Q, XIE K, et al. Functional analysis ofarbuscular mycorrhizal colonization in walnut plantations: the
contribution of cover crops and soil microbial communities[J].the OsNPF4.5 nitrate transporter reveals a conrved
Agriculture, 2021, 12(1): 1mycorrhizal pathway of nitrogen acquisition in plants[J].
[33]Proceedings of the National Academy of Sciences of thePENG Q, WU M M, ZHANG Z K, et al. The interaction of
United States of America, 2020, 117(28): 16649−16659arbuscular mycorrhizal fungi and phosphorus inputs on
[19]lenium uptake by alfalfa (Medicago sativa L.) and leniumROUPHAEL Y, FRANKEN P, SCHNEIDER C, et al.
fraction transformation in soil[J]. Frontiers in Plant Science,Arbuscular mycorrhizal fungi act as biostimulants in
2020, 11: 966horticultural crops[J]. Scientia Horticulturae, 2015, 196:
[34]91−108YE S P, YANG Y J, XIN G R, et al. Studies of the Italian
[20]AVERKINA I O, HARRIS M, ASARE E O, et al. Pinpointingryegrass-rice rotation system in Southern China: Arbuscular
mycorrhizal symbiosis affects soil microorganisms and enzymeregulatory protein phosphata 2A subunits involved in
activities in the Lolium mutiflorum L. rhizosphere[J]. Appliedbeneficial symbiosis between plants and microbes[J]. BMC
Soil Ecology, 2015, 90: 26−34Plant Biology, 2021, 21(1): 183
[35][21]WIPF D, KRAJINSKI F, VAN TUINEN D, et al. Trading onNOPPHAKAT K, RUNSAENG P, KLINNAWEE L.
the arbuscular mycorrhiza market: from arbuscules to commonAcaulospora as the dominant arbuscular mycorrhizal fungi in
mycorrhizal networks[J]. The New Phytologist, 2019, 223(3):organic lowland rice paddies improves phosphorus availability
1127−1142in soils[J]. Sustainability, 2021, 14(1): 31
[22][36]孙思淼, 常伟, 宋福强. 丛枝菌根真菌提高盐胁迫植物抗SATO T, EZAWA T, CHENG W G, et al. Relea of acid
氧化机制的研究进展[J]. 应用生态学报, 2020, 31(10):
3589−3596mycorrhizal fungus Rhizophagus clarus[J]. Soil Science and
SUN S M, CHANG W, SONG F Q. Mechanism of arbuscularPlant Nutrition, 2015, 61(2): 269−274
mycorrhizal fungi improve the oxidative stress to the host[37]SATO T, HACHIYA S, INAMURA N, et al. Secretion of acid
plants under salt stress: a review[J]. Chine Journal ofphosphata from extraradical hyphae of the arbuscular
Applied Ecology, 2020, 31(10): 3589−3596mycorrhizal fungus Rhizophagus clarus is regulated in
[23]respon to phosphate availability[J]. Mycorrhiza, 2019, 29(6):HERNÁNDEZ D H, LARSEN J, GONZÁLEZ-RODRÍGUEZ
phosphata from extraradical hyphae of arbuscular
599−605A, et al. Cooperation between Sporobolus airoides and
[38]associated arbuscular mycorrhizal fungi for phosphorusSMITH S E, MANJARREZ M, STONOR R, et al. Indigenous
acquisition under drought conditions in an oligotrophic dertarbuscular mycorrhizal (AM) fungi contribute to wheat
ecosystem[J]. Rhizosphere, 2020, 15: 100225phosphate uptake in a mi-arid field environment, shown by
[24]tracking with radioactive phosphorus[J]. Applied Soil Ecology,WANG Z G, BI Y L, JIANG B, et al. Arbuscular mycorrhizal
2015, 96: 68−74fungi enhance soil carbon questration in the coalfields,
[39]Northwest China[J]. Scientific Reports, 2016, 6: 34336李海燕, 束怀瑞, 刘润进. VAM真菌诱导植物产生防御反
[25]INGRAFFIA R, AMATO G, FRENDA A S, et al. Impacts of
应的生物化学及分子生物学基础[J]. 山东农业大学学报(自
然科学版), 2002, 33(1): 107−111
LI H Y, SHU H R, LIU R J. The basis of biochemistry andtransfer, and growth in a wheat/faba bean intercropping
molecular biology for the defence respons induced by vamsystem[J]. PLoS One, 2019, 14(3): e0213672
fungi[J]. Journal of Shandong Agricultural University, 2002,[26]MURATA-KATO S, SATO R, ABE S, et al. Partial
33(1): 107−111mycoheterotrophy in green plants forming Paris-type
arbuscular mycorrhizal fungi on nutrient uptake, N fixation, N
2
1718
[40]
中国生态农业学报(中英文) 2022第 30 卷
HASHEM A, AKHTER A, ALQARAWI A A, et al.as affected by arbuscular mycorrhizal fungi[J]. Pedosphere,
[54]mitigates Fusarium wilt stress[J]. Saudi Journal of BiologicalBASLAM M, GARMENDIA I, GOICOECHEA N. Arbuscular
2011, 21(3): 319−327Mycorrhizal fungi induced activation of tomato defen system
Sciences, 2021, 28(10): 5442−5450mycorrhizal fungi (AMF) improved growth and nutritional
[41]quality of greenhou-grown lettuce[J]. Journal of AgriculturalJAHROMI F, AROCA R, PORCEL R, et al. Influence of
and Food Chemistry, 2011, 59(10): 5504−5515salinity on the in vitro development of Glomus intraradices
[55]and on the in vivo physiological and molecular respons ofCASTELLANOS-MORALES V, VILLEGAS J, WENDELIN
mycorrhizal lettuce plants[J]. Microbial Ecology, 2008, 55(1):S, et al. Root colonisation by the arbuscular mycorrhizal
45−53fungus Glomus intraradices alters the quality of strawberry
[42]fruits (Fragaria × ananassa Duch.) at different nitrogenHUANG Z, ZOU Z R, HE C X, et al. Physiological and
levels[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2010,photosynthetic respons of melon (Cucumis melo L.)
90: 1774−1782edlings to three Glomus species under water deficit[J]. Plant
[56]and Soil, 2011, 339(1/2): 391−399TORRES N, GOICOECHEA N, ZAMARREÑO A M, et al.
[43]WU Q S, SRIVASTAVA A K, ZOU Y N. AMF-inducedMycorrhizal symbiosis affects ABA metabolism during berry
ripening in Vitis vinifera L. cv. Tempranillo grown undertolerance to drought stress in citrus: a review[J]. Scientia
climate change scenarios[J]. Plant Science, 2018, 274:Horticulturae, 2013, 164: 77−87
383−393[44]JABBOROVA D, ANNAPURNA K, AL-SADI A M, et al.
[57]Biochar and arbuscular mycorrhizal fungi mediated enhancedSALES F R, SILVA A O, SALES L R, et al. Native arbuscular
drought tolerance in Okra (Abelmoschus esculentus) plantmycorrhizal fungi exhibit biotechnological potential in
growth, root morphological traits and physiologicalimprovement of soil biochemical quality and in increasing
properties[J]. Saudi Journal of Biological Sciences, 2021,yield in sugarcane cultivars[J]. Sugar Tech, 2021, 23(6):
28(10): 5490−54991235−1246
[45][58]SMITH S E, JAKOBSEN I, GRØNLUND M, et al. Roles ofGÓMEZ-BELLOT M J, ORTUÑO M F, NORTES P A, et al.
arbuscular mycorrhizas in plant phosphorus nutrition:Mycorrhizal Euonymus plants and reclaimed water: Biomass,
interactions between pathways of phosphorus uptake inwater status and nutritional respons[J]. Scientia Horticulturae,
arbuscular mycorrhizal roots have important implications for2015, 186: 61−69
understanding and manipulating plant phosphorus[59]HOEKSEMA J D, CHAUDHARY V B, GEHRING C A, et al.
[46]inoculation with mycorrhizal fungi[J]. Ecology Letters, 2010,OMIROU M, IOANNIDES I M, EHALIOTIS C. Mycorrhizal
acquisition[J]. Plant Physiology, 2011, 156(3): 1050−1057A meta-analysis of context-dependency in plant respon to
13(3): 394−407inoculation affects arbuscular mycorrhizal diversity in
[60]watermelon roots, but leads to improved colonization and plantZHENG J Q, CUI M M, WANG C, et al. Elevated CO,
respon under water stress only[J]. Applied Soil Ecology,warming, N addition, and incread precipitation affect
2013, 63: 112−119different aspects of the arbuscular mycorrhizal fungal
[47]community[J]. The Science of the Total Environment, 2022,AUGÉ R M. Water relations, drought and vesicular-arbuscular
[48][61]ALVES G S, BERTINI S C B, BARBOSA B B, et al. FungalHART M M, FORSYTHE J, OSHOWSKI B, et al. Hiding in a
2
806(Pt 1): 150522mycorrhizal symbiosis[J]. Mycorrhiza, 2001, 11(1): 3−42
endophytes inoculation improves soil nutrient availability,crowd — does diversity facilitate persistence of a low-quality
arbuscular mycorrhizal colonization and common beanfungal partner in the mycorrhizal symbiosis?[J]. Symbiosis,
growth[J]. Rhizosphere, 2021, 18: 1003302013, 59(1): 47−56
[49][62]JANOUŠKOVÁ M, VOSÁTKA M, ROSSI L, et al. Effects ofOLSSON P A, RAHM J, ALIASGHARZAD N. Carbon
arbuscular mycorrhizal inoculation on cadmium accumulationdynamics in mycorrhizal symbios is linked to carbon costs
by different tobacco (Nicotiana tabacum L.) types[J]. Appliedand phosphorus benefits[J]. FEMS Microbiology Ecology,
Soil Ecology, 2007, 35(3): 502−5102010, 72(1): 125−131
[50][63]EL-SAWAH A, EL-KEBLAWY A, ALI D N, et al. ArbuscularKIERS E T, DUHAMEL M, BEESETTY Y, et al. Reciprocal
mycorrhizal fungi and plant growth-promoting rhizobacteriarewards stabilize cooperation in the mycorrhizal symbiosis[J].
enhance soil key enzymes, plant growth, ed yield, andScience, 2011, 333(6044): 880−882
qualitative attributes of guar[J]. Agriculture, 2021, 11(3): 194[64]MUTHUKUMAR T, UDAIYAN K, MANIAN S. Vesicular-
[51]YOU Y Q, WANG L, JU C, et al. Effects of arbusculararbuscular mycorrhizae in tropical dges of southern India[J].
[65]Phragmites australis (Cav.) Trin. ex Steud underLANFRANCO L, FIORILLI V, GUTJAHR C. Partner
Biology and Fertility of Soils, 1996, 22(1/2): 96−100mycorrhizal fungi on the growth and toxic element uptake of
zinc/cadmium stress[J]. Ecotoxicology and Environmentalcommunication and role of nutrients in the arbuscular
Safety, 2021, 213: 112023mycorrhizal symbiosis[J]. The New Phytologist, 2018, 220(4):
[52]1031−1046XIAO Y, ZHAO Z J, CHEN L, et al. Arbuscular mycorrhizal
[66]fungi mitigate the negative effects of straw incorporation onTESTE F P, KARDOL P, TURNER B L, et al. Plant-soil
Trifolium repens in highly Cd-polluted soils[J]. Applied Soilfeedback and the maintenance of diversity in Mediterranean-
Ecology, 2021, 157: 103736climate shrublands[J]. Science, 2017, 355(6321): 173−176
[53][67]LIU L Z, GONG Z Q, ZHANG Y L, et al. Growth, cadmiumGAO D M, PAN X J, RAHMAN M K U, et al. Common
accumulation and physiology of marigold (Tagetes erecta L.)mycorrhizal networks benefit to the asymmetric interspecific
第 11 期储 薇等: 丛枝菌根真菌-植物-根际微生物互作研究进展与展望
1719
facilitation via K exchange in an agricultural intercroppingfrom salt-affected soil enhances the tolerance of maize to
system[J]. Biology and Fertility of Soils, 2021, 57(7): 959−971
[68]WAGG C, VEIGA R, VAN DER HEIJDEN M G A.
salinity in coastal reclamation soil[J]. Agriculture, Ecosystems &
Environment, 2016, 231: 233−239
[83]BENEDUZI A, AMBROSINI A, PASSAGLIA L M P. Plant
Facilitation and antagonism in mycorrhizal networks[M]//
HORTON T R. Mycorrhizal Networks. Dordrecht: Springer,
2015: 203–226
[69]NJERU E M, AVIO L, BOCCI G, et al. Contrasting effects of
growth-promoting rhizobacteria (PGPR): their potential as
antagonists and biocontrol agents[J]. Genetics and Molecular
Biology, 2012, 35(4 suppl): 1044−1051
[84]VAHEDI R, RASOULI-SADAGHIANI M, BARIN M, et al.
cover crops on ‘hot spot’ arbuscular mycorrhizal fungal
communities in organic tomato[J]. Biology and Fertility of
Soils, 2015, 51(2): 151−166
[70]BARTO E K, HILKER M, MÜLLER F, et al. The fungal fast
Interactions between biochar and compost treatment and
mycorrhizal fungi to improve the qualitative properties of a
calcareous soil under rhizobox conditions[J]. Agriculture,
2021, 11(10): 993
[85]VISEN A, BOHRA M, SINGH P N, et al. Two pudomonad
lane: common mycorrhizal networks extend bioactive zones of
allelochemicals in soils[J]. PLoS One, 2011, 6(11): e27195
[71]FILIPPI C, BAGNOLI G, CITERNESI A S, et al.
strains facilitate AMF mycorrhization of litchi (Litchi chinensis
Sonn.) and improving phosphorus uptake[J]. Rhizosphere,
2017, 3: 196−202
[86]VANNINI C, DOMINGO G, FIORILLI V, et al. Proteomic
Ultrastructural spatial distribution of bacteria associated with
sporocarps of Glomus mosae[J]. Symbiosis, 1998, 24: 1−12
[72]ARTURSSON V, JANSSON J K. U of bromodeoxyuridine
immunocapture to identify active bacteria associated with
arbuscular mycorrhizal hyphae[J]. Applied and Environmental
Microbiology, 2003, 69(10): 6208−6215
[73]HILDEBRANDT U, OUZIAD F, MARNER F J, et al. The
analysis reveals how pairing of a mycorrhizal fungus with plant
growth-promoting bacteria modulates growth and defen in
wheat[J]. Plant, Cell & Environment, 2021, 44(6): 1946−1960
[87]STIRK W A, STADEN J. Flow of cytokinins through the
bacterium Paenibacillus validus stimulates growth of the
arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intraradices up to the
formation of fertile spores[J]. FEMS Microbiology Letters,
2006, 254(2): 258−267
[74]LI B, RAVNSKOV S, XIE G L, et al. Biocontrol of Pythium
environment[J]. Plant Growth Regulation, 2010, 62(2):
101−116
[88]AZIZI S, KOUCHAKSARAEI M T, HADIAN J, et al. Dual
inoculations of arbuscular mycorrhizal fungi and plant growth-
promoting rhizobacteria boost drought resistance and esntial
oil yield of common myrtle[J]. Forest Ecology and
Management, 2021, 497: 119478
[89]SONG C, SARPONG C K, ZHANG X F, et al.
damping-off in cucumber by arbuscular mycorrhiza-associated
bacteria from the genus Paenibacillus[J]. BioControl, 2007,
52(6): 863−875
[75]JANSA J, BUKOVSKÁ P, GRYNDLER M. Mycorrhizal
Mycorrhizosphere bacteria and plant-plant interactions
facilitate maize P acquisition in an intercropping system[J].
Journal of Cleaner Production, 2021, 314: 127993
[90]MENG L B, ZHANG A Y, WANG F, et al. Arbuscular
hyphae as ecological niche for highly specialized
hypersymbionts - or just soil free-riders?[J]. Frontiers in Plant
Science, 2013, 4: 134
[76]BAREA J M, AZCÓN R, AZCÓN-AGUILAR C.
mycorrhizal fungi and Rhizobium facilitate nitrogen uptake and
transfer in soybean/maize intercropping system[J]. Frontiers in
Plant Science, 2015, 6: 339
[91]CHEN L, SWENSON N G, JI N N, et al. Differential soil
Mycorrhizosphere interactions to improve plant fitness and soil
quality[J]. Antonie Van Leeuwenhoek, 2002, 81(1/2/3/4):
343−351
[77]RICHARDSON A E, BAREA J M, MCNEILL A M, et al.
[92]SMITH S E, READ D J. Mycorrhizal symbiosis[J]. Quarterly
[93]FRITZ M, JAKOBSEN I, LYNGKJÆR M F, et al. Arbuscular
fungus accumulation and density dependence of trees in a
subtropical forest[J]. Science, 2019, 366(6461): 124−128
Acquisition of phosphorus and nitrogen in the rhizosphere and
plant growth promotion by microorganisms[J]. Plant and Soil,
2009, 321(1/2): 305−339
[78]BIDONDO L F, COLOMBO R P, BOMPADRE M J, et al.
Review of Biology, 2008, 3(3): 273−281
Cultivable bacteria associated with infective propagules of
arbuscular mycorrhizal fungi. Implications for mycorrhizal
activity[J]. Applied Soil Ecology, 2016, 105: 86−90
[79]ROESTI D, INEICHEN K, BRAISSANT O, et al. Bacteria
mycorrhiza reduces susceptibility of tomato to Alternaria
solani[J]. Mycorrhiza, 2006, 16(6): 413−419
[94]黄京华, 曾任森, 骆世明. AM菌根真菌诱导对提高玉米纹
枯病抗性的初步研究[J]. 中国生态农业学报, 2006, 14(3):
167−169
HUANG J H, ZENG R S, LUO S M. Studies on dia
resistance of maize toward sheath blight induced by arbuscular
mycorrhizal fungi[J]. Chine Journal of Eco-Agriculture,
2006, 14(3): 167−169
[95]LIN P, ZHANG M Y, WANG M Y, et al. Inoculation with
associated with spores of the arbuscular mycorrhizal fungi
Glomus geosporum and Glomus constrictum[J]. Applied and
Environmental Microbiology, 2005, 71(11): 6673−6679
[80]LONG L K, ZHU H H, YAO Q, et al. Analysis of bacterial
communities associated with spores of Gigaspora margarita
and Gigaspora roa[J]. Plant and Soil, 2008, 310(1/2): 1−9
[81]MOHITE B. Isolation and characterization of indole acetic acid
arbuscular mycorrhizal fungus modulates defen-related genes
expression in banana edlings susceptible to wilt dia[J].
Plant Signaling & Behavior, 2021, 16(5): 1884782
[96]李海燕, 刘润进, 束怀瑞. 丛枝菌根真菌提高植物抗病性
(IAA) producing bacteria from rhizospheric soil and its effect
on plant growth[J]. Journal of Soil Science and Plant Nutrition,
2013, 13(3): 638−649
[82]KRISHNAMOORTHY R, KIM K, SUBRAMANIAN P, et al.
的作用机制[J]. 菌物系统, 2001, 20(3): 435−439
LI H Y, LIU R J, SHU H R. Mechanism of AM fungiArbuscular mycorrhizal fungi and associated bacteria isolated
1720
中国生态农业学报(中英文) 2022第 30 卷
improving plant dia resistance[J]. Mycosystema, 2001,mycoheterotrophic plants of tropical forests: a stable isotope
20(3): 435−439analysis[J]. Plant Physiology, 2011, 156(2): 952−961
[111][97]JACOTT C, MURRAY J, RIDOUT C. Trade-offs inSIMARD S W, BEILER K J, BINGHAM M A, et al.
arbuscular mycorrhizal symbiosis: dia resistance, growthMycorrhizal networks: mechanisms, ecology and modelling[J].
respons and perspectives for crop breeding[J]. Agronomy,Fungal Biology Reviews, 2012, 26(1): 39−60
2017, 7(4): 75[112]SONG Y Y, ZENG R S, XU J F, et al. Interplant
[98]SINGH S, AWASTHI L P, VERMA H N. Systemic resistancecommunication of tomato plants through underground common
[113]management of viral dias of crops[M]//AWSTHI L P.PIETIKÄINEN A, KYTÖVIITA M M. Defoliation changes
mycorrhizal networks[J]. PLoS One, 2010, 5(10): e13324inducers from plants — an ecofriendly approach for the
Applied Plant Virology. Amsterdam: Elvier, 2020: 603–617mycorrhizal benefit and competitive interactions between
[99]edlings and adult plants[J]. Journal of Ecology, 2007, 95(4):PEPE A, GIOVANNETTI M, SBRANA C. Different levels of
639−647hyphal lf-incompatibility modulate interconnectedness of
[114]mycorrhizal networks in three arbuscular mycorrhizal fungiBINGHAM M A, SIMARD S W. Do mycorrhizal network
within the Glomeraceae[J]. Mycorrhiza, 2016, 26(4): 325−332benefits to survival and growth of interior Douglas-fir
[100]edlings increa with soil moisture stress?[J]. Ecology andPIETERSE C M J, VAN DER DOES D, ZAMIOUDIS C, et al.
Evolution, 2011, 1(3): 306−316Hormonal modulation of plant immunity[J]. Annual Review of
[115]Cell and Developmental Biology, 2012, 28: 489−521AWAYDUL A, ZHU W Y, YUAN Y G, et al. Common
[101]PINEDA A, ZHENG S J, VAN LOON J J A, et al. Helpingmycorrhizal networks influence the distribution of mineral
nutrients between an invasive plant, Solidago canadensis, andplants to deal with incts: the role of beneficial soil-borne
a native plant, Kummerowa striata[J]. Mycorrhiza, 2019,microbes[J]. Trends in Plant Science, 2010, 15(9): 507−514
29(1): 29−38[102]李岩, 李俊喜, 徐丽娟, 等. 分根培养系统中AM真菌抑制
[116]ZHANG H L, WANG X Y, GAO Y Z, et al. Short-term N
大豆胞囊线虫病的效应[J]. 微生物学通报, 2010, 37(11):
1610−1616transfer from alfalfa to maize is dependent more on arbuscular
LI Y, LI J X, XU L J, et al. The effectiveness of arbuscularmycorrhizal fungi than root exudates in N deficient soil[J].
mycorrhizal fungi to antagonize soybean cyst nematodePlant and Soil, 2020, 446(1/2): 23−41
dia[J]. Microbiology China, 2010, 37(11): 1610−1616[117]LI C J, LI H G, HOFFLAND E, et al. Common mycorrhizal
[103]王艳玲, 胡正嘉. VA菌根真菌对蕃茄线虫病的影响[J]. 华networks asymmetrically improve chickpea N and P
acquisition and cau overyielding by a millet/chickpea
mixture[J]. Plant and Soil, 2022, 472(1/2): 279−293WANG Y L, HU Z J. Effect of VA mycorrhiza on
[118]nematodiasis of tomato[J]. Journal of Huazhong AgriculturalMERCKX V. Mycoheterotrophy: the Biology of Plants Living
[119][104]TESTE F P, SIMARD S W, DURALL D M, et al. Net carbonSANGWAN S, PRASANNA R. Mycorrhizae helper bacteria:
中农业大学学报, 2000, 19(1): 25−28
University, 2000, 19(1): 25−28on Fungi[M]. Berlin: Springer, 2013: 19-101
unlocking their potential as bioenhancers of plant-arbusculartransfer between Pudotsuga menziesii var. glauca edlings
mycorrhizal fungal associations[J]. Microbial Ecology, 2021,in the field is influenced by soil disturbance[J]. Journal of
84(1): 1−10Ecology, 2010, 98(2): 429−439
[105][120]HARINIKUMAR K M, BAGYARAJ D J. Potential ofYUAN Y G, VAN KLEUNEN M, LI J M. A parasite
earthworms, ants, millipedes, and termites for dismination ofindirectly affects nutrient distribution by common mycorrhizal
vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi in soil[J]. Biology andnetworks between host and neighboring plants[J]. Ecology,
Fertility of Soils, 1994, 18(2): 115−1182021, 102(5): e03339
[106][121]GIOVANNETTI M, AVIO L, FORTUNA P, et al. At the root李莎, 斯那永宗, 徐若, 等. 丛枝菌丝网络介导苜蓿植株
of the wood wide web: lf recognition and non-lf
incompatibility in mycorrhizal networks[J]. Plant Signaling &29(4): 382−388
Behavior, 2006, 1(1): 1−5LI S, SINA Y Z, XU R, et al. Defen signal transmission
[107]between alfalfa plants through underground mycorrhizalCROLL D, GIOVANNETTI M, KOCH A M, et al. Nonlf
间机械损伤信号的传递[J]. 热带亚热带植物学报, 2021,
network[J]. Journal of Tropical and Subtropical Botany, 2021,vegetative fusion and genetic exchange in the arbuscular
29(4): 382−388mycorrhizal fungus Glomus intraradices[J]. New Phytologist,
[122]2009, 181(4): 924−937GIOVANNETTI M, AZZOLINI D, CITERNESI A S.
[108]LEAKE J, JOHNSON D, DONNELLY D, et al. Networks ofAnastomosis formation and nuclear and protoplasmic exchange
plant communities and agroecosystemMicrobiology, 1999, 65(12): 5571−5575controlling
[123]functioning[J]. Canadian Journal of Botany, 2004, 82(8):ALAUX P L, NAVEAU F, DECLERCK S, et al. Common
in arbuscular mycorrhizal fungi[J]. Applied and Environmentalpower and influence: the role of mycorrhizal mycelium in
1016−1045mycorrhizal network induced JA/ET genes expression in
[109]GIRLANDA M, SEGRETO R, CAFASSO D, et al.healthy potato plants connected to potato plants infected by
Phytophthora infestans[J]. Frontiers in Plant Science, 2020, 11:Photosynthetic Mediterranean meadow orchids feature partial
602mycoheterotrophy and specific mycorrhizal associations[J].
[124]American Journal of Botany, 2011, 98(7): 1148−1163ENGELMOER D J P, BEHM J E, KIERS E T. Inten
and metabolism in mycorrhizal networksvitro root microbiome negatively affects total fungalnitrogen
[110]COURTY P E, WALDER F, BOLLER T, et al. Carbon andcompetition between arbuscular mycorrhizal mutualists in an in
第 11 期储 薇等: 丛枝菌根真菌-植物-根际微生物互作研究进展与展望
[129]
[130]CRUZ A F, ISHII T. Arbuscular mycorrhizal fungal spores
1721
[125]MEDINA M J H, GAGNON H, PICHÉ Y, et al. Root
[126]ALAUX P L, ZHANG Y Q, GILBERT L, et al. Can common
[127]DESLIPPE J R, SIMARD S W. Below-ground carbon transfer
[128]KANG F R, YANG B, WUJISIGULENG, et al. Arbuscular
abundance[J]. Molecular Ecology, 2014, 23(6): 1584−1593GEWIN V. Food: an underground revolution[J]. Nature, 2010,
colonization by arbuscular mycorrhizal fungi is affected by the
salicylic acid content of the plant[J]. Plant Science, 2003,
164(6): 993−998
mycorrhizal fungal networks be managed to enhance
ecosystem functionality?[J]. Plants, People, Planet, 2021, 3(5):
433−444
among Betula nana may increa with warming in Arctic
tundra[J]. The New Phytologist, 2011, 192(3): 689−698
mycorrhizal fungi alleviate the negative effect of nitrogen
deposition on ecosystem functions in meadow grassland[J].
Land Degradation & Development, 2020, 31(6): 748−7591424−1430
466(7306): 552−553
host bacteria that affect nutrient biodynamics and biocontrol of
soil-borne plant pathogens[J]. Biology Open, 2012, 1(1):
52−57
[131]GOTTEL N R, CASTRO H F, KERLEY M, et al. Distinct
microbial communities within the endosphere and rhizosphere
of Populus deltoides roots across contrasting soil types[J].
Applied and Environmental Microbiology, 2011, 77(17):
5934−5944
[132]HACQUARD S, SCHADT C W. Towards a holistic
understanding of the beneficial interactions across the Populus
microbiome[J]. The New Phytologist, 2015, 205(4):
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